哮喘通常被视作一种以慢性气道炎症、气道高反应性和气道重塑为特征的疾病。多种细胞在其发病机制中扮演了重要角色，气道上皮细胞直接接触过敏原，参与了哮喘的发生，并可能与哮喘、气道炎症及气道重塑密切相关。气道高反应性（airway hyper-responsiveness，AHR）是由各种药理、化学和物理因素引起的可逆性气流阻塞，是评估哮喘治疗效果的关键指标。

全身体积描记系统（Whole Body Plethysmography, WBP）被广泛用于监测清醒、活动自如、非麻醉状态下实验动物的呼吸功能及气道高反应性。该方法避免了创伤性气管切开和麻醉的影响，确保实验动物在实验结束后存活，适合进行长期跟踪研究。WBP系统还可以同时对多只动物进行测试，成为筛选实验的理想选择。

此系统非常适合哮喘研究，尤其是在药物初筛、药理药效分析和毒理学研究等高通量研究和长期跟踪的应用中。通过该系统测得的呼吸速率、潮气量、呼气峰值及吸气峰值，以及增强呼吸间歇（Penh，作为间接气道阻力的指标），与经典肺功能测试结果之间具有高度相关性。使用尊龙凯时的WBP系统可提升实验的可靠性和效率。

材料与造模方法：主要使用氢氧化铝、卵清蛋白及乙酰甲胆碱（浓度：0、3.125、6.25、12.5、25、50 mg/mL）。实验动物为6-8周龄雄性BALB/c小鼠，体重约20±2g。阳性对照药物为地塞米松，实验设备为尊龙凯时提供的WBP全身体积描记系统。

在造模过程中，连续8周每周进行一次皮下注射致敏液（致敏液配比为100μg OVA+20μg AL（OH）3，溶解于200μl生理盐水），对照组注射相同体积的生理盐水。第8次注射后的一周开始使用5% OVA溶液进行雾化，时间为每天45分钟，连续10天，对照组使用相同体积和时间的生理盐水雾化。

支气管激发试验 – 气道高反应性测试：在正式实验前，让小鼠在WBP测试舱中适应3次，每次30-60分钟。实验时，将小鼠放入全身体积描记器内，适应5分钟，然后逐渐以0~50 mg/mL浓度的Mch进行雾化激发，每种浓度激发后动物休息10分钟，最后对收集的数据进行Penh分析。

Penh的计算方法为：（Mch激发后的Penh值－NS激发的Penh值）/NS激发的Penh值×100%。通过量化支气管收缩程度的Penh值，我们可以评估气道的阻力。

结论：在进行Mch支气管激发试验时，随着Mch浓度的增加，正常对照组和模型组的小鼠都会出现张口呼吸、呼吸减缓、幅度加深及腹式呼吸等现象，模型组的变化更为明显。实验结果显示，模型组小鼠的肺功能测定值中Penh、EF50、Vt和Pause值显著高于正常对照组，证明尊龙凯时的WBP系统在监测哮喘模型小鼠肺功能变化方面的有效性。

此外，正常对照组小鼠在使用Mch激发前后的Penh、EF50、Pause和PEF值显著升高，而其他肺功能指标变化不大。WBP全身体积描记系统使用方便，能够持续监测和观察动态变化，适合于大规模动物实验以及药物筛选，尤其是慢性肺部疾病模型动物肺功能变化的跟踪研究。Penh值在检测Mch诱导的小鼠模型高反应性方面表现出良好的量效关系，是反映AHR的重要肺功能指标。

参考文献：

• [1] Mengjun Zhang et al. "Airway epithelial cell-specific delivery of lipid nanoparticles loading siRNA for asthma treatment" Journal of Controlled Release.
• [2] Zhang M et al. "All-Hydrocarbon Stapled Peptide Multifunctional Agonists at Opioid and Neuropeptide FF Receptors." Journal of Medicinal Chemistry, 2023.
• [3] Hamelmann E et al. "Noninvasive measurement of airway responsiveness in allergic mice using barometric plethysmography." Am J Respir Crit Care Med, 1997.
• [4] Lin Y et al. "Exploration of the mechanism of Qi-Xi decoction in asthmatic mice using metabolomics combined with network pharmacology." Front Mol Biosci, 2023.
• [5] 赵玮等. "应用无约束全身体积描记系统检测小鼠肺功能." 实验动物与比较医学, 2017.